PCR法检测乙肝DNA准确性的主要影响因素分析
摘要
关键词
PCR法;检测;乙肝DNA;影响因素
正文
PCR法检测具有敏感度和特异度均较高、操作简便等优势,且可以在较短的时间内获得检测结果[1]。近年来,PCR试验伴随着分子生物学发展、现代医学发展而广泛应用于临床疾病检验当中。乙肝是一种传播范围极广、危害性极大的常见传染性病症,伴随患者病情进一步发展,极可能演变为慢性肝炎、肝硬化等疾病,严重影响患者的身心健康及生活质量。PCR法检测乙肝DNA有利于临床医务人员鉴别诊断患者的病情,对治疗方案的制定及调整具有重要指导意义,但伴随临床研究逐渐深入,发现检测结果的准确性可受多种因素的影响[2]。本文将PCR法检测乙肝DNA准确性的相关影响因素作为研究重点,详细内容整理如下。
1资料、方法
1.1资料
本文于研究期内择取100例乙型肝炎病毒感染患者作为观察对象,均为2021年3月至2022年3月入院,以上患者当中,包含44例男性,包含56例女性;年龄统计范围19-73岁,年龄均值求取为(51.76±3.31)岁。
入选标准:经临床检查明确诊断为乙型肝炎病毒感染,且同疾病诊断标准所涉及相关内容相符者;病历资料完整者。
排除标准:并发严重器质性疾病者;精神状态异常,无法配合检验工作者。
1.2方法
所有乙型肝炎病毒感染患者均接受PCR法检测,采集其晨间空腹肘静脉血,将其注入至血清管干燥试管当中。实施离心处理后开展PCR试验。先进行DNA提取,然后取5u模板加入PCR反应体系中上机扩增,于50℃2min→94℃5min 1个循环,完成预变性处理,随后于94℃15s→57℃30s 45个循环进行核酸扩增,遵照试剂盒当中的要求,完成标准曲线的绘制,并根据标准曲线自动计算标本的定量结果。
1.3观察指标
(1)统计以上乙型肝炎病毒感染患者的PCR检验结果。
(2)分析阳性、阴性样本当中,标本实验室环境不佳占比、抗凝血占比、储存不合理占比、核酸提取方法不合理占比、试剂质量不佳占比情况,以明确影响检验结果准确性的相关因素。
1.4统计学处理
本文应用SPSS20.0处理相关数据,计量资料的表述形式为(),计数资料以“%”予以表述,前者施t检验,后者施卡方检验。数据差异明显且存在统计学意义的表述形式为P<0.05。
2实验结果
2.1 PCR检验结果分析
研究中所纳入的100例乙型肝炎病毒感染患者经PCR检验后,共检出91例阳性,其占比为91.00%;结果呈阴性例数共9例,占比为9.00%。
2.2 PCR法检测乙肝DNA准确性的单因素分析
PCR检验结果呈阴性患者的实验室环境不佳占比、标本抗凝血占比、标本储存不合理占比、核酸提取方法不当占比、仪器准备不当占比、试剂质量不佳占比同阳性患者相比,均明显更高,P<0.05,详见表1所述:
表1:单因素分析[n(%)]
因素 | 阴性(n=9) | 阳性(n=91) | X2/P | |
性别 | 男性 | 3(33.33) | 41(45.05) | 0.457/0.499 |
女性 | 6(66.67) | 50(54.95) | ||
实验室环境 | 良好 | 1(11.11) | 84(92.31) | 42.350/0.001 |
不佳 | 8(88.89) | 7(7.69) | ||
标本抗凝血 | 是 | 8(88.89) | 6(6.59) | 46.069/0.001 |
否 | 1(11.11) | 85(93.41) | ||
标本储存 | 合理 | 2(22.22) | 89(97.80) | 57.123/0.001 |
不合理 | 7(77.78) | 2(2.20) | ||
核酸提取方法 | 合理 | 1(11.11) | 90(98.90) | 77.071/0.001 |
不当 | 8(88.89) | 1(1.10) | ||
仪器准备 | 合理 | 2(22.22) | 88(96.70) | 50.482/0.001 |
不当 | 7(77.78) | 3(3.30) | ||
试剂质量 | 良好 | 0(0.00) | 86(94.51) | 60.754/0.001 |
不佳 | 9(100.00) | 5(5.49) |
2.3 多元回归分析
实验室环境良好赋值为0,反之赋值为1;标本抗凝血赋值为1,反之赋值为0;标本存储合理赋值为0,标本存储不合理赋值为1;核酸提取方法合理赋值为0,不合理赋值为1;仪器准备合理赋值为0,仪器准备不当赋值为1;试剂质量良好赋值为0,不佳赋值为1。经多元回归分析,实验室环境不佳、标本抗凝血、标本储存不合理、核酸提取方法不当、仪器准备不当、试剂质量不佳同PCR法检测准确性之间有密切关联,P<0.05。详见表2所述:
表2:分析PCR法检测准确性的相关影响因素
相关因素 | β值 | SE值 | Wald卡方值 | P | OR | 95%CI |
实验室环境不佳 | 0.689 | 0.457 | 2.273 | 0.004 | 1.992 | 0.813~4.878 |
标本抗凝血 | 0.765 | 0.558 | 1.880 | 0.002 | 2.149 | 0.720~6.415 |
标本储存不合理 | 0.913 | 0.462 | 3.905 | 0.008 | 2.492 | 1.008~6.163 |
核酸提取方法不当 | 0.607 | 0.539 | 1.268 | 0.000 | 1.835 | 0.638~5.277 |
仪器准备不当 | 0.885 | 0.594 | 2.220 | 0.000 | 2.423 | 0.756~7.762 |
试剂质量不佳 | 1.165 | 0.972 | 1.437 | 0.026 | 3.206 | 0.477~21.544 |
3讨论
乙肝DNA定量检测可以客观且准确的反映乙型肝炎病毒感染和复制情况,对于临床用药、预后评估而言均具有重要指导作用[3]。荧光定量聚合酶链反应(PCR)属于目前临床中检测乙肝DNA的主要措施,具有可实时测定、定量范围宽等优势,且测定结果具有良好的重复性[4]。但是伴随临床研究进一步深入,发现标本因素、PCR扩增因素等均可对检测结果的准确性产生影响。
本次研究中,乙型肝炎感染患者经PCR检测发现,阳性占比为91.00%,阴性占比为9.00%,阴性患者当中实验室环境不佳占比显著更高,提示实验室环境状态同PCR检验结果准确性之间存在密切关联。分析其原因,PCR检测技术的灵敏度较高,若检测过程中一旦有污染情况出现,即可能导致误诊或漏诊情况。为此临床相关工作人员需要严格遵照规范化管理标准、技术验收标准,对实验室区域进行划分,针对实验室的试剂贮存区、标本制备区、扩增区以及扩增产物分析区落实相应的管理对策,将实验室内相关工作人员的培训力度加强,保证其可以准确、规范化完成相关检测操作[5,6]。
研究结果显示,标本抗凝血占比显著占更高水平,分析其原因,乙肝病毒感染患者的血液当中存在乙肝DNA,将患者的血清和血浆等作为检测标本。通常枸橼酸钠血浆、EDTA血浆等均可用于PCR检测,虽然可结合Ma2+,但是其水平相对更高,对检测结果所产生的影响极小[7]。相对而言,肝素可以有效抑制聚合酶活性,作为抗凝素可能对标本的裂解产生影响,进而对检验结果的准确性产生不良影响。为此PCR检测过程中,医务人员需要尽可能避免应用肝素。
研究中,检验标本储存不合理占比显著更高,分析其原因,细胞当中的酶可以降解DNA,若检测标本静置的时间>3h、标本储存环境的温度>25℃,极可能促使标本发生变性反应。为此,检验室相关工作人员需要分离血清、血浆以后储存检验标本,保证标本存放环境的温度在-20℃[8]。
研究结果提示,核酸提取方法、仪器准备不当等均可对检测结果的准确性产生影响。分析其原因,不同的核酸提取方法可获得不同的结果,相关工作人员需要结合具体情况,合理选择核酸提取的方式,以提高检测结果的准确性,将病症误诊、漏诊的情况减少;PCR检测对于仪器具有极高的依赖性,扩增仪、以及离心机等任一环节出现问题,均可能影响检测结果的准确性。例如,若扩增仪有孔间差不准确的情况存在,可能降低扩增速率,甚至导致扩增失败[9];离心机质量、离心时间等均可影响检测结果,若离心力不足或者离心时间较短,可对后续检测工作的开展产生影响,提高误诊率[10]。工作人员开展PCR检测相关操作前,需要对相关仪器是否可正常运转展开检查,充分重视清洁消毒工作[11]。研究中,检测结果呈阴性患者的试剂质量不佳占比显著更高,试剂质量同模板提取、引物位点的选择等有密切关联,任一环节存在问题,均可对检测结果的准确性产生影响[12]。
将PCR检测乙肝DNA的准确性提升,可以帮助临床医务人员准确判断患者的病情,帮助其为患者制定科学、合理的治疗方案,保证疾病治疗效果,促进患者预后改善[13]。临床相关工作人员需要深入贯彻PCR检测相关操作规程,落实管理措施,通过定期学习培训、改进管理对策等方式,持续性改进检测工作的质量[14];从检测各环节着手落实质控管理措施,保证检测工作的合理性,促进检测相关工作人员专业素养提升,加强设备保养、维护力度,将环境、设备等因素对检测结果准确性所产生的影响减小[15]。
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