miR-223-3p通过调控TLR4/NF-kB信号通路减轻缺氧复氧诱导的H9c2心肌细胞损伤

期刊: 现代医学研究 DOI: PDF下载

阚福强

义乌市中心医院 心内科,浙江 义乌 322000

摘要

目的 探讨miR-223-3p在缺氧复氧(H/R)诱导的H9c2心肌细胞损伤中的作用及其机制。方法 体外培养大鼠H9c2心肌细胞,建立H/R模型,分为Control组、H/R组、H/R+NC组、H/R+miR-223-3p inhibitor组。通过CCK-8检测细胞活力,RT-qPCR检测miR-223-3p表达,Western blot分析TLR4、磷酸化NF-kB、p65蛋白水平,ELISA检测炎性因子TNF-α、IL-6及乳酸脱氢酶(LDH)释放。结果 与Control组相比,H/R组细胞活力显著下降(58.3±3.2%) vs (98.7±2.1%),(P<0.05),miR-223-3p表达上调3.2倍(P<0.05),TLR4、p65蛋白水平及TNF-α、IL-6、LDH含量升高(P<0.05)。H/R+NC组与H/R组无显著差异(P>0.05);而H/R+miR-223-3p inhibitor组细胞活力进一步降低至(42.5±2.8%)(P<0.05),TLR4、p65蛋白表达及炎性因子释放显著加剧(P<0.05)。结论miR-223-3p可能通过抑制TLR4/NF-kB信号通路减轻H/R诱导的心肌细胞损伤。


关键词

miR-223-3p;TLR4/NF-kB信号通路;缺氧复氧;心肌细胞损伤

正文

基金项目:金华市科技计划项目

课题编号:2020-4-152))

课题名称miRNA-223调节TLR4/NF-κB信号通路在心肌缺血再灌注损伤中的作用机制  

心肌缺血再灌注(I/R)损伤是急性心肌梗死、心脏手术及经皮冠状动脉介入治疗(PCI)后常见的临床并发症,其病理过程以短暂缺血后恢复血流引发的心肌细胞二次损伤为特征,显著影响患者预后[1]。尽管再灌注治疗可挽救缺血心肌,但再灌注本身通过氧化应激、钙超载、线粒体功能障碍及炎性反应等机制加剧细胞损伤,甚至诱发恶性心律失常或心力衰竭[2]。目前临床干预手段(如抗氧化剂、钙通道阻滞剂)虽能部分缓解损伤,但仍存在疗效有限、靶向性不足等问题[3],因此,深入解析I/R损伤的分子机制并寻找新型治疗靶点具有重要临床意义。

微小RNAmiRNA)作为基因表达的关键调控因子,在心肌I/R损伤中发挥重要作用。研究表明,miRNA可通过调控细胞凋亡、自噬及炎性通路影响损伤进程。例如,miR-21通过激活PI3K/Akt信号通路减少凋亡并促进心肌细胞存活[4],而miR-140-3p通过抑制PI3K/Akt加剧氧化应激和细胞死亡[5]。这些发现提示,miRNA在不同病理阶段可能呈现双向调控作用,其功能高度依赖于靶基因及信号通路的特异性。

近年研究发现,miR-223-3p在心血管疾病中具有复杂作用。在动脉粥样硬化模型中,miR-223-3p通过抑制NLRP3炎性小体减轻斑块炎症[6];而在心力衰竭中,其表达下调与心肌纤维化及收缩功能障碍密切相关。值得注意的是,miR-223-3p被证实可直接靶向TLR4 mRNA 3'UTR,抑制TLR4/NF-kB信号通路,从而减轻脓毒症相关心肌炎性损伤。然而,其在心肌I/R损伤中的具体作用尚未明确。TLR4/NF-通路作为炎性反应的核心调控轴,在I/R损伤中通过释放TNF-α、IL-6等促炎因子驱动心肌细胞死亡,但针对该通路的直接抑制剂因全身毒性难以临床应用。若miR-223-3p能够特异性调控TLR4/NF-kB活性,可能为开发精准治疗策略提供新方向。基于此,本研究通过构建H9c2心肌细胞缺氧复氧(H/R)模型,探讨miR-223-3p对细胞活力、炎性因子释放及TLR4/NF-kB通路活性的影响,旨在揭示其在I/R损伤中的调控机制,为靶向miRNA的心肌保护策略提供实验依据。

  

 

1 材料与方法 

1. 1 实验材料  

1.11 细胞与试剂  

细胞系:大鼠心肌细胞H9c2(上海赛百慷生物技术有限公司,货号iCell-r012)。

1.12 仪器与软件  

CO₂细胞培养箱(Thermo Scientific,8000);缺氧工作站(1% O₂、5% CO₂、94% N₂,Heal Force);酶标仪(BIO-RAD,iMark);实时荧光定量PCR仪(Roche,LightCycler 480II); 电泳仪及转膜系统(BIO-RAD,Mini Protein 3 Cell);化学发光成像仪(天能,Tanon 5200);  

数据分析软件:GraphPad Prism 8.0、ImageJ、Excel  

1.2 实验方法  

1.21 细胞培养

从液氮中取出冻存的H9c2细胞,37℃水浴快速解冻,离心(1000 rpm,5 min)后重悬于含10%胎牛血清、1%双抗的DMEM培养基,接种于60 mm培养皿,置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。细胞融合度达80%时,0.25%胰酶消化传代,按1:2比例分瓶,取3~5代细胞用于实验。  

1.22  H/R模型建立  

待细胞贴壁后,更换为无糖DMEM培养基,置于缺氧工作站(1% O₂、5% CO₂、94% N₂,37℃)培养6 h。弃去无糖培养基,更换为含10%胎牛血清的正常DMEM培养基,置于常氧(5% CO₂、95%空气,37℃)培养16 h。  

1.23 统计学分析  

采用SPSS22.0统计软件进行数据分析,定量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析。以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果 

2.1  miR-223-3pH9c2细胞活力的影响

CCK8实验结果表明,细胞造模后,细胞活力下调,加入对照后没有变化,加入miR-223-3p inhibitor后,细胞活力进一步下调。

2.2  miR-223-3p表达水平

PCR结果表明,细胞造模后,miR-223-3p表达上调,加入对照后没有变化,加入miR-223-3p inhibitor后,miR-223-3p表达显著下调。  

2.3  Western blot检测  

WB结果表明,构建心肌细胞缺氧复氧模型后,p65TLR4表达上调,再加入抑制剂处理后,p65TLR4表达进一步上调。

2.4 炎性因子释放

ELISA结果表明,细胞造模后,TNFαIL6LDH表达上调,使用抑制剂干预后,TNFαIL6LDH表达进一步上调。 

 

3 讨论  

本研究首次揭示miR-223-3pH/R诱导的心肌细胞损伤中通过调控TLR4/NF-kB信号通路发挥关键作用。H/R组中miR-223-3p表达上调(P<0.05),而抑制其表达后,TLR4p-p65蛋白及炎性因子(TNF-α、IL-6LDH)水平进一步显著升高(P<0.05),提示miR-223-3p可能通过负向调控TLR4/NF-kB通路减轻炎性损伤。TLR4/NF-kB通路是心肌I/R损伤的核心机制,其激活可诱导TNF-α、IL-6等促炎因子释放尽管本研究未直接验证靶向关系,但蛋白表达趋势支持二者存在潜在调控。阴性对照组(H/R+NC)与H/R组无显著差异(P>0.05),排除了非特异性干扰,增强了结论可靠性。

综上所述,miR-223-3p可能通过抑制TLR4/NF-kB信号通路减轻H/R诱导的心肌细胞损伤,而抑制其表达可显著加剧炎性反应及细胞死亡。本研究为miRNA调控心肌I/R损伤提供了新视角,但需通过体内实验进一步验证其临床价值。  

 

参考文献  

Hausenloy DJ, Yellon DM. Myocardial ischemia-reperfusion injury: a neglected therapeutic target[J]. J Clin Invest, 2013, 123(1): 92-100.
[2] Yellon DM, Hausenloy DJ. Myocardial reperfusion injury[J]. N Engl J Med, 2007, 357(11): 1121-1135.
[3] Heusch G. Molecular basis of cardioprotection: signal transduction in ischemic pre-, post-, and remote conditioning[J]. Circ Res, 2015, 116(4): 674-699.
[4] Yuan Y, et al. Role mechanism of miR-21 on hypoxia-induced rat cardiomyocyte activity by activating PI3K/Akt signaling pathway[J]. Chongqing Med, 2021, 50(13): 2165-2170.
[5] Zheng W, et al. MiR-140-3p alleviates hypoxia/reoxygenation-induced myocardial cell injury by regulating PI3K/Akt pathway[J]. J Baotou Med, 2024, 40(8): 26-30.
[6] Haneklaus M, et al. miR-223: infection, inflammation and cancer[J]. J Intern Med, 2013, 274(3): 215-226.

 


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